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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Desarrollo y ensayo de dos procedimientos para la detección rápida de Streptococcus agalactiae en exudados vaginorrectales]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,ASSE (MSP) Red de Atención Primaria en Salud Laboratorio Central]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Summary Introduction: group B streptococcal infection (GBS) may seriously affect mother and fetuses during pregnancy, and the newborn after delivery. Today, diagnosis of colonization during pregnancy is done by means of microbiological methods of vaginal and rectal exudates. Objective: to develop fast and low cost methods to detect the GBS specific group antigen in vaginal-rectal exudates. Method: we used two EGB strains, one of the (IH23) autochthonous and the reference strain O90R, that only expresses the group specific polysaccharide. We prepared a polyclonal antiserum for each one of them which was used to conduct an immunochromatographic test and a latex agglutination test. We used bacterial culture, EGB purified polysaccharides and vagina,-rectal samples as control. Results: detection limits obtained for the immunochromatographic test were 210 µg/ml and 50 µg/ml for purified polysaccharides and cell wall, respectively, there being no EGB antigens detected in the clinical samples analyzed. Latex detection limit was 65 µg/ml compared to purified polysaccharides of IH23 culture supernatant and 6,5 x 107 UFC/ml of IH23. Sensitivity and specificity for latex was 30% and 90% respectively. Conclusions: the methods used failed to reach the detection limit required for its application in our clinical samples. This agrees with what is described in bibliography about quick tests based on antigen-antibody reactions and indicated the need to add previous extraction and concentration steps or to improve the quality of the immunologic reagents used.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Resumo Introdução: a infecção por Estreptococo grupo B (EGB) pode afetar gravemente a mãe e o feto durante a gravidez e o recém nascido imediatamente depois do parto. Atualmente, o diagnóstico de colonização durante a gestação é feita por métodos microbiológicos empregando exsudados vaginorretais. Objetivo: desenvolver métodos rápidos de baixo custo para a detecção do antígeno grupo específico de EGB em exsudados vaginorretais. Material e método: foram utilizadas duas cepas de EGB, uma autóctone (IH23) e a cepa de referência O90R, que expressa somente o polissacarídeo específico do grupo. Para cada uma foi preparado um antisoro policlonal utilizado para o desenvolvimento de um teste imunocromatográfico e um de aglutinação de látex. Foram empregados cultivos bacterianos, polissacarídeos purificados de EGB e amostras vaginorretais como controles. Resultados: os limites de detecção obtidos para a imunocromatografia foram de 210 µg/ml e 50 µg/ml para os polissacarídeos purificados de sobrenadante e parede, respectivamente, no sendo possível detectar antígenos de EGB nas amostras clínicas analisadas. O limite de detecção do látex foi 65 µg/ml quando comparado com o polissacarídeo purificado de sobrenadante de cultivo de IH23 y 6,5 x 107 UFC/ml de IH23. A sensibilidade e especificidade para o látex foi de 30% y 90%, respectivamente. Conclusões: os métodos desenvolvidos não alcançaram o limite de detecção requerido para sua aplicação em amostras clínicas. Estes resultados são similares aos dados descritos na bibliografia para ensaios rápidos baseados em reações antígeno-anticorpo e mostram a necessidade de agregar passos prévios de extração e concentração ou melhorar a qualidade dos reativos imunológicos utilizados.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[STREPTOCOCCUS AGALACTIAE]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[COMPLICACIONES INFECCIOSAS DEL EMBARAZO]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[STREPTOCOCCUS AGALACTIAE]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[PREGNANCY COMPLICATIONS, INFECTIOUS]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p><strong><font face="Verdana" size="4">Desarrollo y ensayo de dos procedimientos para la detecci&oacute;n r&aacute;pida de <em>Streptococcus agalactiae </em>en exudados vaginorrectales</font></strong></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana"><em><font size="2">Tamara Iglesias<a href="#.">*</a>, Qu&iacute;m. Farm. Susana C&aacute;ceres<a href="#.">*</a>, Dr. Gustavo Rey<a href="#..">&dagger;</a>, Lic. Geraldine Rimsky<a href="#.">*</a>, Dres. Gustavo Varela<a href="#..">&Dagger;</a>, Mar&iacute;a In&eacute;s Mota<a  href="#...">&Dagger;</a>, T&eacute;cs. Ival&uacute; Tallac</font></em><font size="2"><a  href="#....">&sect;</a><em>, Mariana Silveira</em><a href="#....">&sect;</a><em>, Dres. Leonardo Anzalone</em><a href="#....">&sect;</a><em>, Alberto Nieto<a href="#.">*</a>, Iris Miraballes-Mart&iacute;nez<a  href="#.">*</a></em></font></font></p>     <p></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Resumen </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2">Introducci&oacute;n:<strong> </strong>la infecci&oacute;n por Estreptococo grupo B (EGB) puede afectar gravemente a la madre y al feto durante la gestaci&oacute;n y al reci&eacute;n nacido luego del parto. Actualmente, el diagn&oacute;stico de colonizaci&oacute;n durante el embarazo se realiza por m&eacute;todos microbiol&oacute;gicos a partir de exudados vaginorrectales.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Objetivo:<strong> </strong>desarrollar m&eacute;todos r&aacute;pidos y de bajo costo para la detecci&oacute;n del ant&iacute;geno grupo espec&iacute;fico de EGB en exudados vaginorrectales.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Material y m&eacute;todo: se utilizaron dos cepas de EGB, una aut&oacute;ctona (IH23) y la cepa de referencia O90R, que solo expresa el polisac&aacute;rido espec&iacute;fico de grupo. Para cada una se prepar&oacute; un antisuero policlonal que se utiliz&oacute; para el desarrollo de un test inmunocromatogr&aacute;fico y uno de aglutinaci&oacute;n de l&aacute;tex. Como controles se emplearon cultivos bacterianos, polisac&aacute;ridos purificados de EGB y muestras vaginorrectales.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Resultados:<strong> </strong>los l&iacute;mites de detecci&oacute;n obtenidos para la inmunocromatograf&iacute;a fueron de 210 &micro;g/ml y 50 &micro;g/ml para los polisac&aacute;ridos purificados de sobrenadante y pared, respectivamente, no logr&aacute;ndose detectar ant&iacute;genos de EGB en las muestras cl&iacute;nicas analizadas. El l&iacute;mite de detecci&oacute;n del l&aacute;tex fue 65 &micro;g/ml frente al polisac&aacute;rido purificado de sobrenadante de cultivo de IH23 y 6,5 x 107 UFC/ml de IH23. La sensibilidad y especificidad para el l&aacute;tex fue de 30% y 90%, respectivamente<strong>.</strong></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Conclusiones:<strong> </strong>los m&eacute;todos desarrollados no alcanzaron el l&iacute;mite de detecci&oacute;n requerido para su aplicaci&oacute;n en muestras cl&iacute;nicas. Esto concuerda con lo descripto en la bibliograf&iacute;a para ensayos r&aacute;pidos basados en reacciones ant&iacute;geno-anticuerpo y muestra la necesidad de agregar pasos previos de extracci&oacute;n y concentraci&oacute;n o mejorar la calidad de los reactivos inmunol&oacute;gicos empleados.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Palabras clave: </strong><em> STREPTOCOCCUS AGALACTIAE<strong>.</strong></em></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em> COMPLICACIONES INFECCIOSAS DEL EMBARAZO - diagn&oacute;stico.</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Keywords:<em> </em></strong><em> STREPTOCOCCUS AGALACTIAE.</em></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>PREGNANCY COMPLICATIONS, INFECTIOUS - diagnosis.</em></font></p>     <p></p>     <p></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><a name="."></a>* Laboratorio del &Aacute;rea Biotecnolog&iacute;a. Polo Tecnol&oacute;gico de Pando, Facultad de Qu&iacute;mica (LBT-PTP-FQ). Universidad de la Rep&uacute;blica. Uruguay.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><a name=".."></a>&dagger; Cl&iacute;nica Ginecol&oacute;gica B. Hospital de Cl&iacute;nicas. Facultad de Medicina. Universidad de la Rep&uacute;blica. Uruguay.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><a name="..."></a>&Dagger; C&aacute;tedra de Bacteriolog&iacute;a y Virolog&iacute;a, Facultad de Medicina. Universidad de la Rep&uacute;blica. Uruguay.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><em><a name="...."></a>&sect;</em> Laboratorio Central de la Red de Atenci&oacute;n Primaria en Salud (LAPS) de ASSE (MSP) Uruguay.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Correspondencia:</strong> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Dra. Iris Miraballes-Mart&iacute;nez</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">CP 91000 - Cno. Aparicio Saravia s/n, Polo Tecnol&oacute;gico de Pando, Pando, Canelones. Uruguay. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Correo electr&oacute;nico: <a  href="mailto:iris.miraballes@gmail.com">iris.miraballes@gmail.com</a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Recibido: 18/10/10.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Aceptado: 16/5/11.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Trabajo realizado en el marco del Proyecto N&ordm; 384 financiado por la Comisi&oacute;n Sectorial de Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica (CSIC) - Programa de Investigaci&oacute;n para la Inclusi&oacute;n Social. Universidad de la Rep&uacute;blica. Uruguay</font></p>     <p></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Introducci&oacute;n</strong></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Streptococcus agalactiae </em>o Estreptococo grupo B (EGB) es un coco grampositivo anaerobio facultativo, encapsulado y de acuerdo al polisac&aacute;rido de su c&aacute;psula, se pueden distinguir los serotipos: Ia, Ib, Ia/c, II, III, IV, V, VI, VII y VIII(<a href="#bib1"><sup>1</sup></a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Puede encontrarse formando parte de la "flora normal" del aparato digestivo, urinario y genital de los adultos y, aunque normalmente no ocasiona problemas a las mujeres sanas no embarazadas, puede provocar una enfermedad grave al reci&eacute;n nacido despu&eacute;s del parto y tambi&eacute;n a la madre y al feto durante la gestaci&oacute;n(<a  href="#bib2"><sup>2,3</sup></a>). La infecci&oacute;n por EGB puede incrementar el riesgo de parto prematuro, rotura prematura de las membranas y de &oacute;bito fetal, as&iacute; como provocar, adem&aacute;s, complicaciones maternas como endometritis posparto(<a  href="#bib3"><sup>3</sup></a>). </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">El screening que se realiza entre las 35-37 semanas de gestaci&oacute;n de la colonizaci&oacute;n maternal por EGB y el uso de antibi&oacute;ticos profil&aacute;cticos intraparto ha resultado en una importante reducci&oacute;n de la infecci&oacute;n temprana en reci&eacute;n nacidos. Sin embargo, las tasas de colonizaci&oacute;n materna permanecen incambiadas desde los a&ntilde;os 70(<a href="#bib4"><sup>4</sup></a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La frecuencia de portaci&oacute;n de EGB en mujeres embarazadas es variable y depende de varios factores como edad, nivel socioecon&oacute;mico, raza, entre otros. En pa&iacute;ses desarrollados los porcentajes van desde 34% en Estados Unidos(<a  href="#bib5"><sup>5</sup></a>) a 15% en Francia(<a href="#bib6"><sup>6</sup></a>). En Am&eacute;rica Latina, la frecuencia global es de 14%(<a href="#bib7"><sup>7</sup></a>), con extremos como Trinidad y Tobago con una prevalencia de 32,9%(<a  href="#bib8"><sup>8</sup></a>) y M&eacute;xico con 4%(<a href="#bib9"><sup>9</sup></a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En Uruguay, estudios realizados en 2001 en el Hospital Central de las Fuerzas Armadas, y en 2006 en una instituci&oacute;n de asistencia m&eacute;dica colectiva de Montevideo, en embarazadas entre las 35 y 37 semanas de gestaci&oacute;n, mostraron que el porcentaje de aislamiento de EGB fue de 20% y 25%, respectivamente(<a href="#bib10"><sup>10,11</sup></a>). En un trabajo realizado en Minas, Uruguay, en 2004 se reportaron cinco casos de sepsis y meningitis por EGB en nueve meses, cuatro de ellos fatales(<a href="#bib12"><sup>12</sup></a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">M&aacute;s recientemente, en un estudio llevado a cabo durante el a&ntilde;o 2009 en el Centro Hospitalario Pereira Rossell se determin&oacute; una prevalencia de 17,3%(<a href="#bib13"><sup>13</sup></a>). </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">En Uruguay, las pautas del control de embarazo emitidas por el Ministerio de Salud P&uacute;blica (MSP)(<a href="#bib14"><sup>14</sup></a>), seg&uacute;n las recomendaciones del CDC 2002(<a href="#bib15"><sup>15</sup></a>), hacen obligatorio el tamizaje para el EGB entre las 35 y 37 semanas de gestaci&oacute;n. Si no se realiz&oacute; dicho estudio se tratar&aacute;n en forma profil&aacute;ctica todas las embarazadas con riesgo de presentar infecci&oacute;n(<a href="#bib14"><sup>14,16-19</sup></a>), es decir, aquellas que presenten trabajo de parto de pret&eacute;rmino, rotura prematura de membranas de m&aacute;s de 18 horas, fiebre durante el trabajo de parto, infecci&oacute;n urinaria o bacteriuria por EGB, o antecedentes obst&eacute;tricos de reci&eacute;n nacido con infecci&oacute;n de EGB. En muchos de estos casos el tratamiento es emp&iacute;rico, pudiendo tener consecuencias graves aunque poco frecuentes (shock anafil&aacute;ctico). </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Dado que actualmente el diagn&oacute;stico se realiza por ensayos microbiol&oacute;gicos y que los cultivos demoran m&aacute;s de 48 horas, los resultados no est&aacute;n disponibles a tiempo para realizar la profilaxis antibi&oacute;tica preparto. Estas dificultades han llevado a que las investigaciones en el &aacute;mbito mundial se dirijan al desarrollo de pruebas de detecci&oacute;n precoz r&aacute;pidas y de alta precisi&oacute;n que puedan realizarse durante el parto(<a href="#bib20"><sup>20,21</sup></a>). La implementaci&oacute;n de un test r&aacute;pido y sencillo ser&iacute;a muy &uacute;til para su aplicaci&oacute;n: a) durante la consulta con el obstetra; b) en el preparto, especialmente en aquellas mujeres con amenaza de parto de pret&eacute;rmino o rotura de membranas en las que actualmente no se realiza el despistaje; c) en el caso de embarazos no controlados para EGB con el fin de poder detectar la bacteria en el preparto y comenzar el tratamiento.</font></p>     <p> <font face="Verdana" size="2">Dentro de los posibles formatos de tests r&aacute;pidos, puede mencionarse la aglutinaci&oacute;n de part&iacute;culas de l&aacute;tex y la inmunocromatograf&iacute;a. Se trata de ensayos de bajo costo y f&aacute;cil implementaci&oacute;n, que no requieren entrenamiento especializado y en los que es m&iacute;nimo el equipamiento necesario para su ejecuci&oacute;n. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los tests de inmunocromatograf&iacute;a son ampliamente utilizados(<a  href="#bib22"><sup>22,23</sup></a>) y han alcanzado gran desarrollo en las dos &uacute;ltimas d&eacute;cadas. El revelado de la reacci&oacute;n ant&iacute;geno-anticuerpo ocurre por la concentraci&oacute;n del conjugado a oro coloidal en zonas de la tira de nitrocelulosa donde previamente se han fijado anticuerpos de captura del analito a determinar.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El objetivo del presente trabajo fue desarrollar y evaluar ambas alternativas de tests r&aacute;pidos para la detecci&oacute;n de EGB en exudados vaginorrectales.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Material y m&eacute;todo</strong></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se cultivaron dos cepas de EGB, un aislado local (IH23) y la cepa O90R (ATCC N&ordm; 12386), que solo expresa el polisac&aacute;rido espec&iacute;fico del grupo B(<a href="#bib24"><sup>24,25</sup></a>). Con cada cepa se prepar&oacute; un antisuero policlonal espec&iacute;fico en conejo. Se purificaron las fracciones inmunoglobulina (Ig) conteniendo los anticuerpos espec&iacute;ficos por precipitaci&oacute;n con sulfato de amonio y con ellas se procedi&oacute; al desarrollo de los tests r&aacute;pidos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">En el sistema de inmunocromatograf&iacute;a se usaron los anticuerpos de conejo tanto para la captura de las bacterias como para el revelado de la misma mediante conjugados de dichos anticuerpos a oro coloidal.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En el caso del reactivo l&aacute;tex se estandarizaron las condiciones &oacute;ptimas de adsorci&oacute;n de los anticuerpos a las part&iacute;culas de poliestireno as&iacute; como las condiciones para la estabilizaci&oacute;n coloidal del sistema.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>A. Obtenci&oacute;n de los ant&iacute;genos/inmun&oacute;genos</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Cultivo e inactivaci&oacute;n</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se utilizaron dos cepas de EGB<em>: </em>una cepa local (IH23), aislada del introito vaginal de una mujer embarazada (Instituto de Higiene, Facultad de Medicina) y la cepa de referencia O90R (ATCC N&ordm; 12386) que solo expresa el polisac&aacute;rido espec&iacute;fico de grupo y no el espec&iacute;fico de serotipo. Sobre cada una se realiz&oacute;: estudio de la morfolog&iacute;a colonial y tipo de hem&oacute;lisis en placas de tripte&iacute;na soya agar con el agregado de sangre ovina al 5% (ASO 5%), coloraci&oacute;n de gram, prueba de catalasa y test de CAMP. La producci&oacute;n del carbohidrato espec&iacute;fico de grupo B se confirm&oacute; mediante un ensayo comercial de aglutinaci&oacute;n de l&aacute;tex (Oxoid(r), UK). </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Cada cepa se sembr&oacute; en placas de ASO 5% incub&aacute;ndose en aerobiosis a 37 &ordm;C por 24 horas. Cuatro a ocho colonias de cada una se resuspendieron en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril para alcanzar una concentraci&oacute;n de 108 UFC/ml (MacFarland 0,5). Un ml de cada suspensi&oacute;n se sembr&oacute; en 100 ml caldo Todd-Hewitt (Oxoid(r), UK) incub&aacute;ndose a 37 &ordm;C, en aerobiosis con agitaci&oacute;n a 200 rpm por 24 horas. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Lotes de cultivo de cada cepa fueron inactivados por el agregado de formaldeh&iacute;do a una concentraci&oacute;n final de 1% (Sigma, USA) o azida de sodio (Sigma, USA), 1 mg/ml e incubaci&oacute;n durante una hora. Se verific&oacute; la inactivaci&oacute;n por siembra en ASO 5% y en caldo Todd-Hewitt. </font> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Purificaci&oacute;n de polisac&aacute;ridos de sobrenadante de cultivo de la cepa IH23</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se procedi&oacute; seg&uacute;n el procedimiento descripto por Wessels y colaboradores(<a href="#bib26"><sup>26</sup></a>). Manteniendo la temperatura de trabajo en 4 &ordm;C, se centrifug&oacute; el cultivo a 10.000 rpm durante 20 minutos (Beckman Avanti, USA), el sobrenadante se filtr&oacute; a trav&eacute;s de membranas de 0,22 &micro;m de poro, concentr&oacute; por pasaje a trav&eacute;s de membrana de hemodi&aacute;lisis (Renak-E, RE-15H, Cuprophan 1,5 m2), dializ&oacute; exhaustivamente contra agua destilada y liofiliz&oacute;.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se redisolvi&oacute; el liofilizado en 2,5 ml de buffer Tris 10mM pH 7.2, obteni&eacute;ndose una soluci&oacute;n l&iacute;mpida y llev&oacute; a 30% v/v de etanol. Luego de una hora, se centrifug&oacute; durante 20 minutos a 4.050 rpm, y descart&oacute; el precipitado. El sobrenadante se ajust&oacute; a 80% v/v de etanol y luego de 18 horas se centrifug&oacute; a 4.300 rpm durante 20 minutos, descart&oacute; el sobrenadante, el sedimento de aspecto gelatinoso y color gris&aacute;ceo se disolvi&oacute; en 300 &micro;l de agua, dializ&oacute; contra agua destilada y liofiliz&oacute;.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Purificaci&oacute;n de polisac&aacute;ridos de pared a partir de los cultivos de la cepa IH23</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se mantuvo la temperatura de trabajo en 4 &ordm;C. A partir de un cultivo inactivado con azida(<a href="#bib26"><sup>26</sup></a>), se lavaron las c&eacute;lulas dos veces con soluci&oacute;n de NaCL 9g/L y centrifugaron a 10.000 rpm durante 20 minutos. Se resuspendieron en soluci&oacute;n de fosfato de potasio 50 mM pH 7.5, EDTA 10 mM, NaCl 150 mM en relaci&oacute;n 1g de sedimento h&uacute;medo por 2,5 ml de soluci&oacute;n, dializaron contra fosfato de potasio 50 mM pH 7.5, EDTA 10 mM, NaCl 150 mM, azida de sodio al 0,1%, se aplic&oacute; ultrasonido (Hielscher UP200S, Alemania) (50% amplitud, 0,5 ciclos, 20 minutos) y agit&oacute; en vaiv&eacute;n toda la noche, en presencia de esferas de vidrio. Se centrifugaron los restos de c&eacute;lulas a 12.000 rpm, 15 minutos. Se adicion&oacute; etanol al 30% (v/v) gota a gota al sobrenadante l&iacute;mpido con agitaci&oacute;n en ba&ntilde;o de hielo, centrifug&oacute; en las condiciones descriptas antes y descart&oacute; el precipitado. El sobrenadante se llev&oacute; a 80% (v/v) en etanol y almacen&oacute; toda la noche. El precipitado se recuper&oacute; por centrifugaci&oacute;n a 4.300 rpm, 20 minutos, redisolvi&oacute;, dializ&oacute; contra agua destilada y liofiliz&oacute;.</font></p>     <p></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><em>Preparaci&oacute;n de antisueros anti EGB</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El protocolo utilizado fue sometido a la Comisi&oacute;n Honoraria de Experimentaci&oacute;n Animal (CHEA). Se prepar&oacute; un antisuero policlonal espec&iacute;fico en conejo con cada cepa (IH23 y O90R).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se emplearon conejos raza New Zealand de ocho semanas de edad; en el d&iacute;a 0 se extrajo de la vena central una muestra de sangre (5 ml) como referencia (suero preinmune). En los d&iacute;as 1, 3 y 5 se inyect&oacute; por v&iacute;a intravenosa (iv), 1 ml de una suspensi&oacute;n de 2 x 109 UFC formoladas/ml en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril. En los d&iacute;as 8, 10, 12, 15, 17, 19, 22, 24 y 26 se inyect&oacute; por v&iacute;a iv 1 ml de una suspensi&oacute;n de 4 x 109 UFC formoladas/ml en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril. El d&iacute;a 29 del protocolo se realiz&oacute; el sangrado, se separaron los sueros y estos se conservaron a -20 &ordm;C hasta su uso.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Titulaci&oacute;n sueros conejo anti EGB</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se usaron suspensiones de bacterias formoladas de la cepa O90R y de la cepa IH23 a una concentraci&oacute;n de 4 x 109 UFC/ml empleando una gota de Giemsa como l&iacute;quido de contraste. En una placa de fondo blanco se colocaron 50 &micro;L de diluciones de los antisueros y cada una se enfrent&oacute; a 50 &micro;L de las suspensiones de bacterias correspondientes. Se mezcl&oacute; y se agit&oacute; en agitador orbital (60-80 rpm) durante 5 minutos. La presencia o ausencia de aglutinaci&oacute;n se observ&oacute; bajo luz directa e intensa. El t&iacute;tulo se defini&oacute; como el inverso de la &uacute;ltima diluci&oacute;n que present&oacute; aglutinaci&oacute;n.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Desarrollo del reactivo l&aacute;tex</em></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La fracci&oacute;n inmunoglobulinas de los sueros de conejo anti EGB (antiI H23 y anti O90R) obtenidos se purific&oacute; por precipitaci&oacute;n con sulfato de amonio al 37% y posterior di&aacute;lisis contra buffer fosfato 20 mM pH 7. Se ensayaron dos tama&ntilde;os de part&iacute;culas de l&aacute;tex: 0,3 y 0,8 &micro;m; diferentes relaciones de masa anticuerpos/l&aacute;tex; distintas condiciones de adsorci&oacute;n (pH y fuerza i&oacute;nica) y la coadsorci&oacute;n al l&aacute;tex de las inmunoglobulinas con otra prote&iacute;na tal como la seroalb&uacute;mina bovina (BSA, Sigma, USA). </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los diferentes reactivos se prepararon incubando directamente muestras de las inmunoglobulinas con las part&iacute;culas de l&aacute;tex o, en el caso de la coadsorci&oacute;n, premezclando la fracci&oacute;n inmunoglobulina anti EGB con BSA en relaci&oacute;n 1 mg de inmunoglobulina: 1 mg BSA en buffer fosfato 20 mM pH 7 hasta un volumen final de 2,9 ml. Se agreg&oacute; 280 &micro;l de l&aacute;tex (Ikerlat, Espa&ntilde;a) sobre agitador magn&eacute;tico. Las relaciones ensayadas en mg de inmunoglobulinas/mg de l&aacute;tex fueron de 0,036 a 0,048 para las part&iacute;culas de 0,3 y de 0,009 a 0,015 para las part&iacute;culas de 0,8 &micro;m. Se incub&oacute; 30 minutos a temperatura ambiente con agitaci&oacute;n de vaiv&eacute;n (Varimix Thermolyne, USA), se agreg&oacute; 100 &micro;l de una soluci&oacute;n 100 mg/ml de BSA en agua e incub&oacute; 30 minutos m&aacute;s en las mismas condiciones. Por &uacute;ltimo, se agreg&oacute; 0,8 ml de buffer glicina 0,5 M, NaCl 0,75 M, BSA 1 mg/mL, azida de sodio 0,5 mg/mL, pH 8,3 agitando un minuto m&aacute;s. Los reactivos preparados se mantuvieron a 4 &ordm;C hasta su uso.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Desarrollo del test de inmunocromatograf&iacute;a</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se prepararon part&iacute;culas de oro coloidal de diferentes di&aacute;metros por reducci&oacute;n de &aacute;cido tetracloro&aacute;urico (Sigma) con &aacute;cido c&iacute;trico(<a  href="#bib27"><sup>27</sup></a>). Se realiz&oacute; su caracterizaci&oacute;n (?m&aacute;x y Abs m&aacute;x) por espectrofotometr&iacute;a (espectrofot&oacute;metro UV-visible GE Healthcare Ultrospec 3100 Pro, Suecia) y se determin&oacute; el di&aacute;metro promedio por dispersi&oacute;n de luz l&aacute;ser (Malvern Zetasizer Nano, UK).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se realiz&oacute; su conjugaci&oacute;n a los Ac anti EGB cepa IH23(<a  href="#bib28"><sup>28</sup></a>), mezclando 100 mL de la suspensi&oacute;n de oro coloidal con 125 &micro;L de los anticuerpos a la concentraci&oacute;n de 0,1 mg/mL, y se adicion&oacute; 2,5 mL de una soluci&oacute;n de polietilenglicol PM 20000 al 1% en fosfato de sodio 5 mM pH 7. Luego se concentr&oacute; el conjugado por centrifugaci&oacute;n a 20.000 rpm por 20 minutos a 10 &deg;C (Beckman Avanti, USA) y se resuspendi&oacute; el sedimento en fosfato de sodio 10 mM sacarosa 10% pH 7.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Para la preparaci&oacute;n de laminados de fases s&oacute;lidas para inmunocromatograf&iacute;a, como reactivo para la l&iacute;nea de test, se utilizaron anticuerpos anti EGB cepa IH23 de conejo preparados, como se describi&oacute; antes, y para la l&iacute;nea de control anticuerpos antiinmunoglobulinas de conejo hechos en cabra (Dako, Denmark) que se aplicaron mediante el dispensador IsoFlow (IsoFlowTM Dispenser, Arista Biologicals, USA). Se prepar&oacute; la membrana del conjugado a oro coloidal impregn&aacute;ndola con el mismo. Luego se procedi&oacute; al laminado seg&uacute;n la <a href="#1">figura 1</a>, guillotinado (Arista Biologicals, USA) y armado de los casetes para inmunocromatograf&iacute;a. </font> </p>     <p></p> <font face="Verdana" size="2"> <a name="1"></a> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmu/v27n2/2a03f1.gif"></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Recolecci&oacute;n de muestras cl&iacute;nicas</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Las muestras se tomaron y procesaron de acuerdo con los procedimientos empleados en el Laboratorio Central de la Red de Atenci&oacute;n Primaria en Salud (LAPS) a partir de mujeres que cursaban el &uacute;ltimo trimestre de gestaci&oacute;n (35-37 semanas) y que concurrieron al centro de salud para su control de acuerdo a la recomendaci&oacute;n vigente. De cada una se obtuvo previamente el consentimiento informado. El dise&ntilde;o del estudio fue aprobado por el Comit&eacute; de &Eacute;tica de la Facultad de Qu&iacute;mica. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se tomaron muestras por duplicado de vagina (pared y fondo de saco) y del canal rectal mediante hisopos de algod&oacute;n. Un hisopo de cada tipo de muestra se coloc&oacute; en caldo de enriquecimiento Todd Hewitt suplementado (THS) con &aacute;cido nalid&iacute;xico (15 &micro;g/ml) y gentamicina (8 &micro;g/ml) (BBL, Becton Dickinson) y se incub&oacute; por 24 horas a 37 &ordm;C. Los reaislamientos se realizaron en placa de ASO 5% (TSA, Lonifar SA y sangre ovina Biokey) y en medio Granada (Bioplak). En este segundo medio se coloc&oacute; un cubreobjetos sobre las l&iacute;neas de siembra para crear una c&aacute;mara microaer&oacute;fila. Las placas se incubaron durante 24 horas a 37 &ordm;C. Transcurrido este tiempo se observ&oacute; la presencia de crecimiento en el medio Granada, tomando como positivas para EGB las colonias de color anaranjado.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Tambi&eacute;n se realiz&oacute; la lectura de las placas ASO 5% en busca de colonias beta-hemol&iacute;ticas sospechosas de EGB. Para confirmar se realiz&oacute; prueba de aglutinaci&oacute;n de l&aacute;tex (Pastorex Strep B, Bio-Rad y Streptoccocal grouping Kit, Oxoid) y una prueba de CAMP.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los otros dos hisopos se colocaron en un tubo est&eacute;ril con 2 ml del medio THS y se conserv&oacute; a 4 &ordm;C. Estos tubos fueron remitidos al laboratorio de biotecnolog&iacute;a en un plazo m&aacute;ximo de 48 horas, donde se analizaron por las t&eacute;cnicas desarrolladas. Para ello se agit&oacute; cada tubo con los hisopos mediante v&oacute;rtex durante 30 segundos y se tom&oacute; una al&iacute;cuota de la suspensi&oacute;n.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El total de muestras remitidas desde el LAPS con consentimiento informado durante el per&iacute;odo de estudio (mayo a setiembre de 2009) fue de 77.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Evaluaci&oacute;n de los prototipos preparados</em></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Test de aglutinaci&oacute;n de l&aacute;tex</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los reactivos l&aacute;tex preparados se evaluaron por aglutinaci&oacute;n de: a) suspensiones de EGB (cepa local IH23 y cepa O90R) de diferentes concentraciones determinadas por recuento en superficie; b) diferentes soluciones de polisac&aacute;rido purificado obtenido a partir del sobrenadante del cultivo de la cepa IH23; c) muestras de exudados vaginorrectales. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Para los ensayos, sobre tarjetas de fondo negro se mezclaron y agitaron sobre agitador orbital a 80 rpm (Thermoline, USA), durante 5 minutos a temperatura ambiente, 50 &micro;l de cada muestra a), b) o c) en PBS con 30 &micro;l de cada uno de los diferentes reactivos l&aacute;tex.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Test de inmunocromatograf&iacute;a</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se ensay&oacute; la inmunorreactividad utilizando: a) soluciones de polisac&aacute;rido purificado de sobrenadante de cultivo de la cepa IH23; b) de pared celular de la cepa IH23; c) muestras de exudados vaginorrectales. Para los ensayos se aplic&oacute; 100 &micro;L de las muestras a), b) o c) en la zona de reacci&oacute;n y se dej&oacute; que avanzara la reacci&oacute;n ley&eacute;ndose los resultados entre los 5-15 minutos. </font> </p>     <p></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><strong>Resultados</strong></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Titulaci&oacute;n antisueros</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El t&iacute;tulo del suero anti O90R fue 1024 y el antiI H23 fue 256.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Evaluaci&oacute;n de los reactivos l&aacute;tex</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se prepararon 19 reactivos (identificados con letras A a S). En la <a  href="/img/revistas/rmu/v27n2/2a03t1.gif">tabla 1</a> se muestran los resultados obtenidos con algunos de los reactivos preparados.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El menor l&iacute;mite de detecci&oacute;n obtenido fue de 65 &micro;g /ml (reactivo O) de polisac&aacute;rido IH23 purificado y de 6,5 x 107 UFC/ml en suspensiones de bacterias obtenidas por cultivo de la cepa IH23 (reactivos K y L). </font> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">El reactivo K se evalu&oacute; en un estudio a ciegas frente a exudados vaginorrectales para determinar la sensibilidad y especificidad diagn&oacute;stica del ensayo. Los resultados fueron comparados con los obtenidos por el procedimiento est&aacute;ndar de b&uacute;squeda de <em>S. agalactiae</em> en el laboratorio de bacteriolog&iacute;a del LAPS. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se procesaron 67 muestras negativas y 10 positivas, obteni&eacute;ndose una sensibilidad de 30% (3/10) y especificidad de 90% (60/67). </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">El reactivo O se evalu&oacute; frente a algunas muestras conocidas positivas y negativas de exudados vaginorrectales no observ&aacute;ndose reactividad para las mismas.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Evaluaci&oacute;n de las tiras de inmunocromatograf&iacute;a</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Las tiras de inmunocromatograf&iacute;a fueron ensayadas frente a diferentes concentraciones de polisac&aacute;rido purificado y a algunas muestras de exudados. Luego de ajustar los distintos elementos componentes de la tira de inmunocromatograf&iacute;a, se obtuvo un l&iacute;mite de detecci&oacute;n de 210 &micro;g/ml frente a polisac&aacute;rido purificado de sobrenadante y de 50 &micro;g/ml frente a polisac&aacute;rido purificado de pared, ambos de la cepa IH23 (<a href="#2">figura 2</a>). No fue posible detectar ant&iacute;genos de EGB en las muestras positivas de exudados. Al emplear suspensiones de bacterias IH23, el l&iacute;mite de detecci&oacute;n obtenido fue de 1x 105 UFC/ ml.</p> <a name="2"></a> </font>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmu/v27n2/2a03f2.gif"></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Discusi&oacute;n</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Reactivo l&aacute;tex</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Las part&iacute;culas de 0,8 &micro;m permitieron obtener los menores l&iacute;mites de detecci&oacute;n, con anticuerpos espec&iacute;ficos obtenidos contra cualquiera de las cepas. Los l&iacute;mites de detecci&oacute;n tanto frente a polisac&aacute;rido purificado como frente a bacterias enteras fueron similares para los reactivos preparados con los anticuerpos espec&iacute;ficos contra una u otra cepa. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">En los ensayos realizados con el reactivo K frente a muestras de exudados se vio que la sensibilidad diagn&oacute;stica del reactivo l&aacute;tex fue baja (30%) mientras que la especificidad fue de 90%. Esto puede deberse a que los l&iacute;mites de detecci&oacute;n de los reactivos preparados no llegaron a ser lo suficientemente bajos como para detectar la bacteria/ant&iacute;genos en las muestras cl&iacute;nicas. Seg&uacute;n la bibliograf&iacute;a, en el exudado vaginorrectal la concentraci&oacute;n de EGB es relativamente baja, siendo la cantidad m&aacute;xima esperada en una paciente con un alto grado de colonizaci&oacute;n de 3 x 104 microorganismos por hisopo(<a  href="#bib29"><sup>29</sup></a>). </font> </p>     <p> <font face="Verdana" size="2">Con esta sensibilidad el reactivo de l&aacute;tex no podr&iacute;a utilizarse como test de tamizaje ya que se planteaba emplear la t&eacute;cnica en el consultorio del ginec&oacute;logo o en el momento del parto, donde no habr&iacute;a una instancia de enriquecimiento como la que se utiliza en la t&eacute;cnica actual de detecci&oacute;n microbiol&oacute;gica.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Sin embargo, por otra parte, el reactivo mostr&oacute; buena especificidad ya que el n&uacute;mero de falsos positivos es solo de 7 en 67 individuos, un valor bajo considerando que la flora vaginorrectal es bastante compleja y que podr&iacute;an darse reacciones cruzadas entre el EGB y diferentes microorganismos presentes en la muestra. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">La baja sensibilidad alcanzada pudo tambi&eacute;n haberse debido a que el t&iacute;tulo en anticuerpos del antisuero de conejo anti EGB obtenido fuera bajo, y/o que la mayor parte de la respuesta est&eacute; dirigida hacia ant&iacute;genos capsulares serotipo espec&iacute;ficos y no grupo espec&iacute;ficos. Sin embargo, el antisuero proveniente de la inmunizaci&oacute;n con la segunda cepa (O90R) (que no expresa los ant&iacute;genos serotipo espec&iacute;ficos) no mejor&oacute; la sensibilidad del sistema. El reactivo preparado con este nuevo antisuero tuvo un menor l&iacute;mite de detecci&oacute;n del polisac&aacute;rido en soluci&oacute;n pero mantuvo el mismo l&iacute;mite de detecci&oacute;n que los reactivos anteriores cuando se lo enfrent&oacute; a bacterias inactivadas con formol. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Esta diferencia de reconocimiento entre la bacteria entera y el polisac&aacute;rido en soluci&oacute;n podr&iacute;a deberse a que los epitopos se encuentren est&eacute;ricamente impedidos sobre la superficie bacteriana como para ser reconocidos por anticuerpos espec&iacute;ficos inmovilizados sobre las part&iacute;culas de l&aacute;tex. </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">Una posibilidad a ensayar ser&iacute;a el tratamiento de la muestra con &aacute;cido o enzimas de modo de liberar los ant&iacute;genos de la estructura bacteriana y facilitar el reconocimiento, sin embargo, antecedentes que emplean este tratamiento solo logran alcanzar una sensibilidad que va de 33% a 62%(<a href="#bib29"><sup>29</sup></a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos coinciden con los que describe la bibliograf&iacute;a para tests r&aacute;pidos de exudados vaginorrectales sin enriquecimiento de la muestra, con sensibilidades que van de 4% a 37%(<a href="#bib20"><sup>20</sup></a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Tambi&eacute;n se han desarrollado ELISA que llevan mayor tiempo de ejecuci&oacute;n y equipamiento m&aacute;s sofisticado, que han logrado una sensibilidad de entre 11% y 74%(<a href="#bib29"><sup>29</sup></a>).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los mejores resultados se han logrado mediante el empleo de pruebas para la detecci&oacute;n de &aacute;cido desoxirribonucleico o &aacute;cido ribonucleico, como la t&eacute;cnica de real time PCR (polimerase chain reaction)(<a href="#bib21"><sup>21</sup></a>). Cuando se combinan los resultados obtenidos en muestras de exudados vaginales con las rectales alcanza un m&aacute;ximo de 84% de sensibilidad con una especificidad de 84%. Si bien los resultados obtenidos con este m&eacute;todo son muy buenos, es un m&eacute;todo que requiere instrumentaci&oacute;n y reactivos de alto costo. Adem&aacute;s, aunque es una t&eacute;cnica m&aacute;s r&aacute;pida que los cultivos tradicionales, requiere por lo menos dos horas para llevarla a cabo(<a  href="#bib30"><sup>30</sup></a>).</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Inmunocromatograf&iacute;a</em></font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El l&iacute;mite de detecci&oacute;n alcanzado con una suspensi&oacute;n de bacterias de IH23 fue de 1x105 UFC/ml, similar a los tests comerciales disponibles(<a href="#bib31"><sup>31</sup></a>). Solo se han logrado buenos niveles de detecci&oacute;n a partir de las muestras de polisac&aacute;rido purificado a partir de c&eacute;lulas de cultivo, no siendo posible la detecci&oacute;n del EGB en muestras de exudados posiblemente por ser demasiado baja la concentraci&oacute;n bacteriana.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Teniendo en cuenta las investigaciones y recomendaciones internacionales, el reporte del CDC 2010(<a href="#bib4"><sup>4</sup></a>) hace hincapi&eacute; en la necesidad de sostener y mejorar los progresos realizados en la prevenci&oacute;n de la enfermedad neonatal por EGB en cuanto a tamizaje y la profilaxis antibi&oacute;tica hasta que se disponga de una vacuna. Es por esto que cualquier progreso relacionado con el mejoramiento de t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas puede ser una herramienta &uacute;til en aquellos casos en los que el tamizaje no se haya realizado. Aunque en el presente trabajo no se ha logrado la sensibilidad adecuada, se han identificado potenciales alternativas para aumentarla. </font> </p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Conclusiones</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>     <p><font face="Verdana" size="2">No fue posible la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos de EGB mediante los tests r&aacute;pidos desarrollados en las muestras de exudados. Una alternativa para superar este problema ser&iacute;a la introducci&oacute;n de un paso previo de enriquecimiento con una duraci&oacute;n de una o dos horas, previo a la realizaci&oacute;n del test, que permitiera la concentraci&oacute;n de ant&iacute;genos a niveles que fueran detectables por los reactivos preparados. Aunque dicho paso limitar&iacute;a su empleo durante la consulta con el obstetra, tendr&iacute;a importante aplicaci&oacute;n en la detecci&oacute;n de madres portadoras que llegan al parto sin el diagn&oacute;stico previo. Otra posibilidad es la b&uacute;squeda de protocolos de inmunizaci&oacute;n alternativos que permitan mejorar el t&iacute;tulo y la avidez de los anticuerpos generados.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Por &uacute;ltimo, cabe destacar la integraci&oacute;n lograda entre los distintos laboratorios involucrados en el trabajo y el avance alcanzado en el tema en el &aacute;mbito local.</font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Summary</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Introduction: </em>group B streptococcal infection (GBS) may seriously affect mother and fetuses during pregnancy, and the newborn after delivery. Today, diagnosis of colonization during pregnancy is done by means of microbiological methods of vaginal and rectal exudates.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Objective: </em>to develop fast and low cost methods to detect the GBS specific group antigen in vaginal-rectal exudates. </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Method: </em>we used two EGB strains, one of the (IH23) autochthonous and the reference strain O90R, that only expresses the group specific polysaccharide. We prepared a polyclonal antiserum for each one of them which was used to conduct an immunochromatographic test and a latex agglutination test. We used bacterial culture, EGB purified polysaccharides and vagina,-rectal samples as control.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Results:</em> detection limits obtained for the immunochromatographic test were 210 &micro;g/ml and 50 &micro;g/ml for purified polysaccharides and cell wall, respectively, there being no EGB antigens detected in the clinical samples analyzed. Latex detection limit was 65 &micro;g/ml compared to purified polysaccharides of IH23 culture supernatant and 6,5 x 107 UFC/ml of IH23. Sensitivity and specificity for latex was 30% and 90% respectively.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><em>Conclusions:</em> the methods used failed to reach the detection limit required for its application in our clinical samples. This agrees with what is described in bibliography about quick tests based on antigen-antibody reactions and indicated the need to add previous extraction and concentration steps or to improve the quality of the immunologic reagents used. </font></p>     <p></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Resumo </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Introdu&ccedil;&atilde;o: </em>a infec&ccedil;&atilde;o por Estreptococo grupo B (EGB) pode afetar gravemente a m&atilde;e e o feto durante a gravidez e o rec&eacute;m nascido imediatamente depois do parto. Atualmente, o diagn&oacute;stico de coloniza&ccedil;&atilde;o durante a gesta&ccedil;&atilde;o &eacute; feita por m&eacute;todos microbiol&oacute;gicos empregando exsudados vaginorretais.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Objetivo:</em><strong> </strong>desenvolver m&eacute;todos r&aacute;pidos de baixo custo para a detec&ccedil;&atilde;o do ant&iacute;geno grupo espec&iacute;fico de EGB em exsudados vaginorretais.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Material e m&eacute;todo:</em> foram utilizadas duas cepas de EGB, uma aut&oacute;ctone (IH23) e a cepa de refer&ecirc;ncia O90R, que expressa somente o polissacar&iacute;deo espec&iacute;fico do grupo. Para cada uma foi preparado um antisoro policlonal utilizado para o desenvolvimento de um teste imunocromatogr&aacute;fico e um de aglutina&ccedil;&atilde;o de l&aacute;tex. Foram empregados cultivos bacterianos, polissacar&iacute;deos purificados de EGB e amostras vaginorretais como controles.</font></p>     <p><font face="Verdana"><em><font size="2">Resultados:</font></em><font size="2"><strong> </strong>os limites de detec&ccedil;&atilde;o obtidos para a imunocromatografia foram de 210 &micro;g/ml e 50 &micro;g/ml para os polissacar&iacute;deos purificados de sobrenadante e parede, respectivamente, no sendo poss&iacute;vel detectar ant&iacute;genos de EGB nas amostras cl&iacute;nicas analisadas. O limite de detec&ccedil;&atilde;o do l&aacute;tex foi 65 &micro;g/ml quando comparado com o polissacar&iacute;deo purificado de sobrenadante de cultivo de IH23 y 6,5 x 107 UFC/ml de IH23. A sensibilidade e especificidade para o l&aacute;tex foi de 30% y 90%, respectivamente</font></font><strong><font size="2" face="Verdana">.</font></strong></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><em>Conclus&otilde;es:<strong> </strong></em>os m&eacute;todos desenvolvidos n&atilde;o alcan&ccedil;aram o limite de detec&ccedil;&atilde;o requerido para sua aplica&ccedil;&atilde;o em amostras cl&iacute;nicas. Estes resultados s&atilde;o similares aos dados descritos na bibliografia para ensaios r&aacute;pidos baseados em rea&ccedil;&otilde;es ant&iacute;geno-anticorpo e mostram a necessidade de agregar passos pr&eacute;vios de extra&ccedil;&atilde;o e concentra&ccedil;&atilde;o ou melhorar a qualidade dos reativos imunol&oacute;gicos utilizados.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><strong>Bibliograf&iacute;a</strong></font></p>     <p></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib1"></a>1. <strong> Lindahl G, Stalhammar-Carlemalm M, Areschoug T.</strong> Surface proteins of Streptococcus agalactiae and related proteins in other bacterial pathogens. Clin Microbiol Rev 2005; 18(1): 102-27.     </font> </p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib2"></a>2. <strong> Edwards M.</strong> Group B Streptococcal Infections. In: Remington J, Klein J, Wilson Ch, Baker C, eds. Infectious diseases of the fetus and newborn infant. 6th ed. Philadelphia: Elsevier, Saunders, 2006: 404-64.    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib3"></a>3. <strong> Centers for Disease Control and Prevention.</strong> Group B Streptococcal Prevention. Atlanta: CDC, 2006.    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib4"></a>4. <strong> Verani JR, McGee L, Schrag SJ; Division of Bacterial Diseases, National Centerfor Immunization and Respiratory Diseases, Centers for Disease Control and Prevention.</strong> Prevention of perinatal group B streptococcal disease: revised guidelines from CDC, 2010. MMWR Recomm Rep 2010; 59(RR-10): 1-36.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib5"></a>5. <strong> Jaime WE, Edwards RK, Duff P.</strong> Vaginal-perianal compared with vaginal-rectal cultures for identification of group B streptococci. Obstet Gynecol 2004; 104(5 Pt 1): 1058-61.    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib6"></a>6. <strong> Jaur&eacute;guy F, Carton M, Teboul J, Butel MJ, Panel P, Ghnassia JC, et al.</strong> Risk factors and screening strategy for group B streptococcal colonization in pregnant women: results of a prospective study. J Gynecol Obstet Biol Reprod (Paris) 2003; 32(2): 132-8.    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib7"></a>7. <strong> Stoll BJ, Schuchat A.</strong> Maternal carriage of group B streptococci in developing countries. Pediatr Infect Dis J 1998; 17(6): 499-503.    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib8"></a>8. <strong> Orrett F.</strong> Colonization of Group B Streptococci in pregnancy and outcome of infected neonates in Trinidad. Pediatr Int 2003; 45(3): 319-23.    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib9"></a>9. <strong> de Lourdes Collado M, Kretschmer RR, Becker I, Guzm&aacute;n A, Gallardo L, Lepe CM. </strong>Colonization of Mexican pregnant women with group B Streptococcus (Letter). J Infect Dis 1981; 143(1): 134.    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib10"></a>10.<strong> Barillaro S, Monzo C, Negrin G, Brazeiro D.</strong> Prevalencia del estreptococo beta agalactiae en la poblaci&oacute;n de embarazadas que consultan en la D.N.S.FF.AA. Salud Militar 2003; 25(1). Disponible en: <a  href="http://www.dnsffaa.gub.uy/revista/vol25/P48a57V25.htm">http://www.dnsffaa.gub.uy/revista/vol25/P48a57V25.htm</a> (Consulta: 7/6/2010).    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib11"></a>11.<strong> Rivas C, Tallac I, Etchenique A.</strong> Colonizaci&oacute;n vaginorrectal por Streptococcus del grupo B en mujeres embarazadas, entre las 35 a 37 semanas de gestaci&oacute;n. Rev M&eacute;d Urug 2006; 22(3): 191-6.    </font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2"><a name="bib12"></a>12.<strong> Bello Pedrosa O, Perotti Pais E.</strong> Enfermedad invasiva por estreptococo del grupo B. 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