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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Resistencia a fungicidas en Botrytis cinerea en el Uruguay]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Botrytis cinerea causes important losses in various crops and can easily acquire resistance to fungicides. In order to evaluate resistance in Uruguay, the fungicide sensitivity of 169 monosporic isolates from blueberry, tomato, strawberry, vine, rose and eucalyptus from different regions, was assessed. The minimum inhibitory concentration (MIC) of Carbendazim (Carbendazim, 50,0% i.a.), Iprodione (Rovral, 50.0% i.a., BAYER), Pyrimetanil (Mythos, 30.0% i.a., BAYER) and Pyraclostrobin + Boscalid (Bellis, 12.80% y 25.20% i.a., respectively, BASF) was determined. Growth after 48 hours was evaluated on potato dextrose agar (gelatin glucose agar for pirimetanil) with diferent concentrations of fungicide. Populations differing in behavior were found. Resistance to Cabendazim (MIC &gt; 128 mg/l) predominated in all crops samples, except in blueberries. Iprodione MICs ranged from <1 to &gt; 16 mg/l, and 30% of the isolates&acute; MIC was &gt; 8 mg/l. The majority of isolates&acute; MIC was < 4 mg/l of Boscalid + 1 mg/l of Pyraclostrobin, but for 7% MIC was &gt; 32 mg/l + &gt; 16 mg/l. The host crop had a very significant effect on the sensitivity to fungicides. Isolates from blueberries and eucalyptus were the most sensitive, except when the latter were tested with Carbendazim. Isolates from tomato and rose were the most resistant,and those from strawberry were intermediate.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 13pt;" size="4" face="Verdana"><b>Resistencia a fungicidas en </b><i><b>Botrytis cinerea</b></i><b> en el Uruguay </b></font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><a name="1.."></a>Gepp Vivienne<a href="#1."><sup>1</sup></a>, <a name="2.."></a>Vero Silvana<a href="#2."><sup>2</sup></a>, <a name="3.."></a>Cassanello Mar&iacute;a Emilia<a href="#3."><sup>3</sup></a>, Romero Graciela<a href="#1."><sup>1</sup></a>, Silvera Elisa<sup> <a href="#1.">1</a></sup>, Gonz&aacute;lez Pablo<sup> <a href="#1.">1</a></sup>, Rebellato Julia<a href="#1."><sup>1</sup></a>, Ferreira Yohana<sup> <a href="#2.">2</a></sup> , <a name="4.."></a>Bentancur Oscar<sup><a href="#4.">4</a>&nbsp; </sup></font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><sup><i><a name="1."></a><a href="#1..">1</a></i></sup><i>Unidad de Fitopatolog&iacute;a, Departamento de Protecci&oacute;n Vegetal, Facultad de Agronom&iacute;a (Universidad de la Rep&uacute;blica) Garz&oacute;n 780, 12900 Montevideo, Uruguay. Correo electr&oacute;nico: </i><a href="vgepp@fagro.edu.uy" target="_blank">vgepp@fagro.edu.uy</a>&nbsp;</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><sup><i><a name="2."></a><a href="#2..">2</a></i></sup><i>C&aacute;tedra de Microbiolog&iacute;a, Departamento de Biociencias, Facultad de Qu&iacute;mica (Universidad de la Rep&uacute;blica) Av. Gral. Flores 2124, Montevideo, Uruguay. </i></font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><sup><i><a name="3."></a><a href="#3..">3</a></i></sup><i>Unidad de Fitopatolog&iacute;a, Departamento de Protecci&oacute;n Vegetal, E. E. Facultad de Agronom&iacute;a en Salto (Universidad de la Rep&uacute;blica) Ruta 31, km 21,5, Salto.</i></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><sup><i><a name="4."></a><a href="#4..">4</a></i></sup><i>Departamento de Biometr&iacute;a, Estad&iacute;stica y Computaci&oacute;n, Estaci&oacute;n Experimental Mario A. Cassinoni, Ruta 3, km. 363. Facultad de Agronom&iacute;a (Universidad de la Rep&uacute;blica) Paysand&uacute;.</i></font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;" align="center"><font size="2" face="Verdana">Recibido: 11/3/10 Aceptado: 18/8/11</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Resumen</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2"><i><font face="Verdana">Botrytis cinerea provoca p&eacute;rdidas importantes en numerosos cultivos y posee alta capacidad para hacerse resistente a fungicidas. Para conocer la situaci&oacute;n en Uruguay se evalu&oacute; la sensibilidad a fungicidas de 169 aislamientos provenientes de seis cultivos monosp&oacute;ricos provenientes de ar&aacute;ndano, tomate, frutilla, vi&ntilde;a, rosal y eucalipto de diferentes zonas. Se determin&oacute; la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM) de Carbendazim (Carbendazim, 50,0% i.a.), Iprodione (Rovral, 50,0% i.a., BAYER), Pyrimetanil (Mythos, 30,0% i.a., BAYER) y Pyraclostrobin + Boscalid (Bellis, 12,80% y 25,20% i.a., respectivamente, BASF). Se evalu&oacute; crecimiento a las 48 horas en placas con agar papa dextrosa (gelatina&ndash;glucosa para Pyrimetanil) con diferentes concentraciones de fungicida. Se encontraron poblaciones con diferente comportamiento. La resistencia a Carbendazim (CIM&gt;128 mg/l) predomin&oacute; en todos los cultivos muestreados, menos en ar&aacute;ndano. Para Iprodione las CIM se distribuyeron por todos los valores desde &lt;1 a &gt; 16 mg/l y para pirimetanil 30% presentaron CIM &ge; 8 mg/l. La mayor&iacute;a de los aislamientos presentaron CIM &le; 4 mg/l de Boscalid + 1 mg/l de Pyraclostrobin, pero 7% presentaron CIM &gt;32 mg/l + &gt; 16 mg/l. El efecto hospedero fue altamente significativo sobre la sensibilidad a los fungicidas. Los aislamientos provenientes de ar&aacute;ndano y eucalipto fueron los m&aacute;s sensibles, salvo cuando los de eucalipto fueron testeados con Carbendazim. Los aislamientos de tomate y rosa fueron los m&aacute;s resistentes, y los de frutilla intemedios. </font> </i></font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave: </b></font><font size="2" face="Verdana"><span style="font-weight: normal;">ANILINOPIRIMIDINAS, DICARBOXIMIDAS, BENCIMIDAZOLES, CARBOXAMIDAS, MOHO GRIS</span></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Summary</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="4" face="Verdana"><b>Fungicide Resistance in </b><i><b>Botrytis cinerea</b></i> <b>in Uruguay</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><i>Botrytis cinerea causes important losses in various crops and can easily acquire resistance to fungicides. In order to evaluate resistance in Uruguay, the fungicide sensitivity of 169 monosporic isolates from blueberry, tomato, strawberry, vine, rose and eucalyptus from different regions, was assessed. The minimum inhibitory concentration (MIC) of Carbendazim (Carbendazim, 50,0% i.a.), Iprodione (Rovral, 50.0% i.a., BAYER), Pyrimetanil (Mythos, 30.0% i.a., BAYER) and Pyraclostrobin + Boscalid (Bellis, 12.80% y 25.20% i.a., respectively, BASF) was determined. Growth after 48 hours was evaluated on potato dextrose agar (gelatin glucose agar for pirimetanil) with diferent concentrations of fungicide. Populations differing in behavior were found. Resistance to Cabendazim (MIC &gt; 128 mg/l) predominated in all crops samples, except in blueberries. Iprodione MICs ranged from &lt;1 to &gt; 16 mg/l, and 30% of the isolates&acute; MIC was &gt; 8 mg/l. The majority of isolates&acute; MIC was &lt; 4 mg/l of Boscalid + 1 mg/l of Pyraclostrobin, but for 7% MIC was &gt; 32 mg/l + &gt; 16 mg/l. The host crop had a very significant effect on the sensitivity to fungicides. Isolates from blueberries and eucalyptus were the most sensitive, except when the latter were tested with Carbendazim. Isolates from tomato and rose were the most resistant,and those from strawberry were intermediate. </i></font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Key words:</b></font><font size="2" face="Verdana"> ANILINOPIRIMIDINES, DICARBOXIMIDES, BENZIMIDAZOLES, CARBOXAMIDES, GREY MOULD</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><i>Botryotinia fuckeliana</i> (de Bary) Whetzel, m&aacute;s conocido por su anamorfo <i>Botrytis cinerea</i> Pers.: Fr., es un pat&oacute;geno pol&iacute;fago que afecta la producci&oacute;n de numerosos cultivos. En el Uruguay provoca p&eacute;rdidas importantes debido a la pudrici&oacute;n que produce en frutos y otros &oacute;rganos de cultivos como frutilla, tomate, morr&oacute;n, vi&ntilde;a y ar&aacute;ndano, y en plantines de ornamentales y forestales. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El manejo de la enfermedad se basa en una combinaci&oacute;n de medidas culturales y el uso de fungicidas, algunos de m&uacute;ltiples sitios de acci&oacute;n y otros m&aacute;s modernos, m&aacute;s efectivos pero de mayor riesgo de resistencia. Entre &eacute;stos est&aacute;n los bencimidazoles, dicarboximidas, anilinopirimidinas y carboxamidas. <i>B. cinerea</i> es uno de los pat&oacute;genos considerados de alto riesgo para la aparici&oacute;n de cepas resistentes a fungicidas <a name="Russel2004"></a>(<a href="#25">Russel, 2004</a>), y en varios pa&iacute;ses se ha determinado la existencia de cepas resistentes a dicarboximidas <a name="LaMondiayDouglas1997"></a>(<a href="#13">LaMondia y Douglas, 1997</a>; <a name="LennoxySpotts2003"></a><a href="#15">Lennox y Spotts, 2003</a>; <a name="Myresiotisetal.2007"></a><a href="#21">Myresiotis <i>et al</i>., 2007</a>; <a name="YourmanyJeffers1999"></a><a href="#32">Yourman y Jeffers, 1999</a>), anilinopirimidinas <a name="Bardasetal.2008"></a>(<a href="#2">Bardas <i>et al.,</i> 2008</a>; <a name="Baroffioetal.2003"></a><a href="#3">Baroffio <i>et al.,</i> 2003</a>; <a name="ForsteryStaub1996"></a><a href="#8">Forster y Staub, 1996</a>; <a name="Latorreetal.2002"></a><a href="#14">Latorre <i>et al.,</i> 2002</a>; <a name="Moyanoetal.2004"></a><a href="#19">Moyano <i>et al.,</i> 2004</a>), carboxamidas y estrobirulinas <a name="Myresiotisetal.2008"></a> </font> <font size="3" face="Verdana"><small>(<a href="#20">Myresiotis <i>et al</i>., 2008</a></small></font><font size="2" face="Verdana">). En Uruguay se ha detectado resistencia en otros pat&oacute;genos como <i>Penicillium</i> spp. <a name="Santosetal.1989"></a>(<a href="#26">Santos <i>et al</i>., 1989</a>; <a name="Pianzzolaetal.2004"></a><a href="#24">Pianzzola <i>et al</i>., 2004</a>) y <i>Monilinia fructicola</i> <a name="Leoni2004"></a>(<a href="#16">Leoni, 2004</a>) pero no exist&iacute;a informaci&oacute;n experimental sobre la resistencia de <i>B. cinerea </i>a fungicidas en el Uruguay. Este trabajo tuvo como objetivo evaluar la sensibilidad de aislamientos de <i>B. cinerea</i> obtenidos de ar&aacute;ndano, tomate, frutilla, vi&ntilde;a, eucalipto y rosal provenientes de diferentes zonas del pa&iacute;s a los fungicidas: Carbendazim, Iprodione, Pirimetanil y el fungicida mezcla Boscalid + Pyraclostrobin. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Muestreos</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Entre 2006 y 2008 se visitaron m&aacute;s de 50 predios ubicados en diferentes partes del pa&iacute;s y se obtuvieron muestras de tejido vegetal de vi&ntilde;a, tomate en invern&aacute;culo, frutilla, ar&aacute;ndano, eucalipto (vivero bajo malla de sombra) y rosal. En cada predio se sacaron entre 1 y 10 muestras (con s&iacute;ntomas o de &oacute;rganos posiblemente infectados) de diferentes partes del cuadro. Los &oacute;rganos muestreados fueron: uvas maduras o inmaduras, frutos de frutilla, frutos, tallos y restos florales de tomate, flores de ar&aacute;ndano, plantas de eucalipto y p&eacute;talos de rosa. Las muestras se colocaron individualmente en bolsas pl&aacute;sticas en el campo y se conservaron en heladera hasta su procesamiento. Se recab&oacute; informaci&oacute;n de los fungicidas aplicados al cultivo muestreado. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Obtenci&oacute;n y conservaci&oacute;n de aislamientos monosp&oacute;ricos</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El aislamiento se realiz&oacute; en agar malta con 0,02% de sulfato de estreptomicina. Se sembraron conidios directamente de muestras que vinieron del campo esporuladas o luego de incubarlas en c&aacute;mara h&uacute;meda. En el caso de uvas inmaduras, se congelaron durante 12 horas, se desinfectaron con hipoclorito de sodio al 1%, se enjuagaron en agua destilada est&eacute;ril y se colocaron individualmente en c&aacute;maras h&uacute;medas hasta lograr la esporulaci&oacute;n caracter&iacute;stica de <i>Botrytis cinerea</i> <a name="Ellis1971"></a>(<a href="#7">Ellis, 1971</a>). </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Cada aislamiento se sembr&oacute; en un tubo con medio papa dextrosa agar (PDA) y se incub&oacute; durante 15 d&iacute;as hasta lograr la esporulaci&oacute;n. Los conidios se desprendieron por agitaci&oacute;n con 2 ml NaCl 0,9% + 0,05% de Tween 80. Una suspensi&oacute;n de 10<sup>3</sup> &ndash; 10<sup>4</sup> esporas/ml se sembr&oacute; mediante estriado en una placa de PDA y se incub&oacute; a 25 &ordm;C durante 24 o 48 horas para obtener una colonia monosp&oacute;rica por cada aislamiento. Se guardaron discos de micelio en PDA en ependorf con agua destilada est&eacute;ril a 5 &ordm;C para los estudios posteriores. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Ensayos de sensibilidad a fungicidas</b></font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Se determin&oacute; la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM) de los fungicidas: Carbendaz&iacute;m (Carbendazim, 50,0% i.a), Iprodione (Rovral, 50,0% i.a., BAYER), Pyrimetanil (Mythos, 30,0% i.a., BAYER) y el fungicida mezcla Pyraclostrobin + Boscalid (Bellis, 12,80% y 25,20% i.a., respectivamente, BASF). Se probaron las concentraciones: 4, 16, 32 y 128 mg/l para Carbendazim, 1, 2, 4, 8 y 16 mg/l para Iprodione y 0,5, 1, 2, 4 y 8 mg/l para Pyrimetanil. En el caso del fungicida mezcla las concentraciones utilizadas fueron: 2 + 1, 4 + 2, 8 + 4, 16 +8 y 32 + 16 mg/l de Boscalid y de Pyraclostrobin, respectivamente. En cada caso diluciones stock de los fungicidas se prepararon en agua destilada est&eacute;ril a partir de las formulaciones comerciales <a name="Bardasetal.2009"></a>(<a href="#1">Bardas <i>et al</i>., 2009</a>; <a href="#15">Lennox y Spotts, 2003</a>; <a name="Northover1988"></a><a href="#22">Northover, 1988</a>; <a href="#32">Yourman y Jeffers, 1999</a>) de acuerdo a la concentraci&oacute;n de principio activo declarada en cada producto.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Los ensayos de sensibilidad se realizaron mediante el m&eacute;todo de diluci&oacute;n en placa, descrito por <a name="Caba&ntilde;asetal.2009"></a><span style="color: rgb(51, 51, 255);">Caba&ntilde;as </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al</i><span style="color: rgb(51, 51, 255);">.</span> (<a href="#5">2009</a>). Cada aislamiento monosp&oacute;rico se sembr&oacute; en un vial con 5 ml de PDA y se incub&oacute; siete d&iacute;as a 25 &ordm;C. Los conidios se desprendieron por agitaci&oacute;n con 2 ml NaCl 0,9% + 0,05% de Tween 80. Se ajust&oacute; la concentraci&oacute;n a 10<sup>5</sup> esporas/ml por diluci&oacute;n en agua est&eacute;ril. Para el ensayo se utilizaron placas de Petri de 90 mm con 10 ml medio con la correspondiente concentraci&oacute;n de fungicida dispensado el d&iacute;a anterior para evitar la presencia de agua de condensada. El medio utilizado fue PDA, salvo que para pirimetanil se utiliz&oacute; el medio gelatina-glucosa (GG) preparado seg&uacute;n recomendaci&oacute;n de <a name="SierotzkiyEdel2006"></a><span style="color: rgb(51, 51, 255);">Sierotzki y Edel</span> (<a href="#27">2006</a>). El fungicida se agreg&oacute; al medio fundido a 45 &ordm;C, en una soluci&oacute;n en agua destilada esterilizada, inmediatamente antes de dispensar las placas. En cada placa se sembr&oacute; 1&micro;l de la suspensi&oacute;n de esporas en hasta nueve puntos separados entre s&iacute; . Se hicieron dos repeticiones de cada aislamiento. Las placas se incubaron 72 h a 25 &ordm;C, antes de evaluar macrosc&oacute;picamente, presencia o ausencia de crecimiento, determin&aacute;ndose la Concentraci&oacute;n Inhibitoria M&iacute;nima (CIM) , o sea, la m&iacute;nima concentraci&oacute;n del fungicida que causaba 100% de inhibici&oacute;n del crecimiento. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El efecto del hu&eacute;sped del cual proced&iacute;an los aislamientos sobre la sensibilidad (CIM) a cada fungicida fue estudiada ajustando modelos lineales generalizados asumiendo distribuci&oacute;n multinomial ordinal de la variable de respuesta (CIM) mediante el procedimiento GENMOD del paquete estad&iacute;stico SAS versi&oacute;n 9.1.3 (SAS Institute, Cary, NC, 2005). Para la presentaci&oacute;n de los resultados se calcul&oacute; la sensibilidad media de la poblaci&oacute;n de <i>B. cinerea</i> asociada a cada hu&eacute;sped, como la media de las CIM determinadas para los aislamientos correspondientes, dado que la media es consecuencia de la distribuci&oacute;n.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Resultados </b></font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Se obtuvieron 169 aislamientos monosp&oacute;ricos de los cinco cultivos en los muestreos realizados (<a href="#t1">Cuadro 1</a>). En la mayor&iacute;a de los casos, el hongo se obtuvo de &oacute;rganos visiblemente afectados en el campo, aunque en algunas bayas de uva &eacute;ste se desarroll&oacute; luego de incubarse en c&aacute;mara h&uacute;meda.</font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><img style="width: 484px; height: 285px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12t1.GIF"></font></p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;">&nbsp;</p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Se obtuvo informaci&oacute;n correspondiente a los fungicidas aplicados en la mayor&iacute;a de los casos de ar&aacute;ndano, tomate, vi&ntilde;a y eucalipto, pero en pocos de frutilla y rosa. En ar&aacute;ndano se utilizaron dicarboximidas y anilopirimidinas salvo en un predio que s&oacute;lo aplic&oacute; un bencimidazol. En tomate se utilizaron mayor variedad de fungicidas, en general tres a cinco por cultivo, incluyendo hasta tres de los grupos considerados en el ensayo. El porcentaje de aislamientos que proven&iacute;an de cultivos en los cuales se aplicaron dicarboximidas fue 63%, bencimidazoles 47,4%, anilopirimidinas 35%, Boscalid 8,8% y estrobilurinas 12,3%. En el caso de vid, 100% de los 22 aislamientos de los cuales se conocen los tratamientos recibieron dicarboximidas, 81,2% anilopirimidinas y 9% bencimidazoles. En los viveros de eucalipto se aplic&oacute; exclusivamente un fungicida compuesto (anilopirimidinas + fenilpirrol) pero en a&ntilde;os anteriores se utilizaban bencimidazoles.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">Los valores de CIM para cada fungicida obtenidos para cada aislamiento fueron concordantes en dos la repeticiones.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Sensibilidad a Carbendazim</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La mayor&iacute;a (72,4%) de los aislamientos fueron capaces de crecer a&uacute;n en presencia de la mayor concentraci&oacute;n de Carbendazim ensayada (128 mg/l) mientras que el resto no pudo crecer ni siquiera con la menor dosis (4 mg/l) (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><img style="width: 305px; height: 275px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12f1.GIF"></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">En la mayor&iacute;a de los cultivos predominaron los aislamientos con CIM &gt; 128 mg/l (eucalipto y tomate 94%, rosa 83%, frutilla 78%), pero en vi&ntilde;a la proporci&oacute;n fue m&aacute;s pareja (57% resistentes : 43% sensibles) mientras que en ar&aacute;ndano predominaron las cepas sensibles (85% con CIM &lt; 4 mg/l). Al analizar estad&iacute;sticamente la distribuci&oacute;n de la sensibilidad seg&uacute;n hu&eacute;sped, se comprueba la mayor proporci&oacute;n de resistentes en tomate y de sensibles en ar&aacute;ndano (<a href="#t2">Cuadro 2</a>). La distribuci&oacute;n de la sensibilidad en tomate no difiere de las de eucalipto y rosa ni &eacute;stas de la de frutilla, y la de la vid se encuentra entre la de ar&aacute;ndano y la de la frutilla, no difiri&eacute;ndo de &eacute;ste &uacute;ltimo.</font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm;"></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font size="2" face="Verdana"><a name="t2"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font size="2" face="Verdana"><img style="width: 418px; height: 218px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1//1a12t2.GIF"> </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">En ar&aacute;ndano s&oacute;lo se detectaron cuatro cepas resistentes. En el &uacute;nico predio en el que se sabe que se aplic&oacute; un benzimidazol se obtuvo un aislamiento sensible a Carbendazim. En viveros de eucalipto 17 (94%) de los 18 aislamientos resultaron ser resistentes a Carbendazim. En frutilla 28 (77,8%) de los 36 aislamientos fueron resistentes al fungicida. En cuanto a la ubicaci&oacute;n del cultivo, la relaci&oacute;n entre aislamientos resistentes y sensibles fue de cinco a uno en el norte del pa&iacute;s y de tres a uno en el sur.</font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Sensibilidad a Iprodione</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">Los valores de CIM de Iprodione se distribuyeron en todo el rango de concentraciones analizadas y casi la mitad (45%) de la poblaci&oacute;n result&oacute; ser sensible o levemente resistente (CIM &le; 2 mg/l) y solo 25% ten&iacute;a CIM &gt; 16 mg/l (<a href="#f2">Figura 2</a>).</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><img style="width: 310px; height: 274px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12f2.GIF"></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">En eucalipto y en ar&aacute;ndano predominaron los aislamientos sensibles con CIM &le; 2 mg/l (s&oacute;lo una cepa con CIM = 8 mg/l en cada cultivo y ninguno &gt;16 mg/l). En la vid, tambi&eacute;n predominaron los aislamientos m&aacute;s sensibles, con 53,6% con CIM &le; 2 mg/l, pero 21,5% de aislamientos presentaron CIM &ge; 8 mg/l . En frutilla los valores de CIM se distribuyeron por todo el rango, predominando los aislamientos con CIM &ge; 2 mg/l. En tomate casi la mitad (44,6%) de los aislamientos present&oacute; una CIM &ge;16 mg/l.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El an&aacute;lisis estad&iacute;stico de la distribuci&oacute;n de sensibilidad seg&uacute;n hu&eacute;sped permiti&oacute; establecer diferencias de sensibilidad entre las poblaciones asociadas a los diferentes cultivos y ordenarlos de los m&aacute;s sensibles a los m&aacute;s resistentes: primero eucalipto y ar&aacute;ndano, luego vid, el cual se diferenci&oacute; significativamente de ellos pero no de frutilla, y &eacute;ste a su vez, no se diferenci&oacute; de tomate y rosa (<a href="#t3">Cuadro 3</a>). </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><a name="t3"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><img style="width: 310px; height: 274px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12t3.GIF"></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Sensibilidad a Pirimetanil</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">Los valores de concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria de pirimetanil se distribuyeron de manera bimodal, con la mayor&iacute;a 109 (68,1%) aislamientos con CIM &le; 1 mg/l y 48 (30%) con CIM &gt; 8 mg/l. En tomate casi la mitad de los aislamientos ten&iacute;an una CIM &gt;8 mg/l, mientras que en el extremo opuesto, en ninguno de los aislamientos de eucalipto super&oacute; 1 mg/l (<a href="#f3">Figura 3</a>). </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><img style="width: 310px; height: 274px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12f3.GIF"></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">En el contraste de distribuciones se pudo separar tres grupos seg&uacute;n el hu&eacute;sped. Los aislamientos de mayor resistencia media fueron los obtenidos de rosa, tomate, ar&aacute;ndano y frutilla, sin diferencias significativas entre ellos (<a href="#t4">Cuadro 4</a>). Los de vid presentaron una distribuci&oacute;n de valores intermedios que no difer&iacute;an significativamente de los de ar&aacute;ndano y de frutilla. Por &uacute;ltimo se diferenciaron los aislamientos de viveros de eucalipto, todos los cuales evidenciaron gran sensibilidad (CIM &le; 1 mg/l).</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><a name="t4"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font face="Verdana" size="2"><img style="width: 435px; height: 236px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12t4.GIF"></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">En ninguno de los predios con informaci&oacute;n de los fungicidas aplicados se hab&iacute;a aplicado anilinopirimidinas durante el cultivo, con excepci&oacute;n de la vid, el cultivo que le sigue al eucalipto en cuanto a menor proporci&oacute;n de resistentes. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Sensibilidad a Boscalid + Pyraclostrobin</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La mayor&iacute;a de los aislamientos presentar</font><font size="2" face="Verdana">on CIM &lt; 2 mg/l de Boscalid + 1 mg/l de Pyraclostrobin, pero el 7% mostr&oacute; resistencia, con CIM &gt; 32 mg/l + &gt; 16 mg/l de Boscalid y Pyraclostrobin, respectivamente. Estos correspondieron a cinco aislamientos de un mismo vi&ntilde;edo, cuatro de rosa de un predio de floricultores, y en la zona norte: dos de frutilla y uno de tomate (<a href="#f4">Figura 4</a>).</font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font size="2" face="Verdana"><a name="f4"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font size="2" face="Verdana"><img style="width: 314px; height: 280px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12f4.GIF"> </font> </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El contraste de las distribuciones seg&uacute;n cultivo permiti&oacute; diferenciar tres grupos: rosa y vid con m&aacute;s resistencia, frutillla intermedio y tomate, ar&aacute;ndano y eucalipto con menos resistencia (<a href="#t5">Cuadro 5</a>).</font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font size="2" face="Verdana"><a name="t5"></a></font></p>        <p style="margin-bottom: 0cm; text-align: center;"> <font size="2" face="Verdana"><img style="width: 450px; height: 251px;" alt="" src="/img/revistas/agro/v16n1/1a12t5.GIF"> </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Considerando la aplicaci&oacute;n previa del fungicida, s&oacute;lo se obtuvieron cuatro aislamientos de cultivos en los cuales se sabe que se us&oacute; este tipo de producto y ninguno de ellos present&oacute; resistencia. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Resistencia a m&aacute;s de un fungicida</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">Se detectaron aislamientos con resistencia a varios fungicidas. Entre ellos se destacan dos con los m&aacute;ximos valores evaluados de CIM para los cuatro fungicidas, uno proveniente de frutilla y otro de rosa. Cuarenta y cuatro presentaron los mayores valores de CIM para Carbendazim e Iprodione, dieciocho para Carbendazim, Iprodione y Pyrimetanil y ocho para Carbendazim, Iprodione y el fungicida Boscalid + Pyraclostrobin. Estos aislamientos de mayor resistencia proven&iacute;an de tomate, frutilla, vid y rosa. En el otro extremo se encontraron 34 aislamientos con CIM &le; 4 para los cuatro fungicidas, provenientes de los cinco hu&eacute;spedes muestreados.</font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El m&eacute;todo de determinaci&oacute;n de sensibilidad a fungicidas permiti&oacute; detectar diferencias de sensibilidad entre los aislamientos obtenidos. Es un m&eacute;todo sencillo, que requiere poco material y que permite por lo tanto, el an&aacute;lisis de muchas muestras a la vez. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La determinaci&oacute;n de sensibilidad a Boscalid y Pyraclostrobin se realiz&oacute; en forma conjunta. Se trata de dos fungicidas qu&iacute;micamente diferentes, con diferentes sitios de acci&oacute;n. El Boscalid pertenece al grupo de los inhibidores de la succinato deshidrogenasa de la cadena respiratoria f&uacute;ngica. El Pyraclostrobin, por su parte, es una estrobilurina del grupo de los denominados QoI (Quinone outside inhibitors) que inhiben la cadena respiratoria actuando sobre el complejo III. Los hongos como <i>B. cinerea</i> podr&iacute;an utilizar una v&iacute;a oxidativa alternativa, superando la toxicidad de estrobilurinas, para evitar este proceso se incluye SHAM (salicylhydroxamic acid) en el medio de cultivo <a name="WoodyHolomon2003"></a>(<a href="#30">Wood y Holomon, 2003</a>). Sin embargo, actualmente FRAC <a name="Stammler2009"></a>(<a href="#28">Stammler, 2009</a>) no lo recomienda y en este estudio no se utiliz&oacute; tal compuesto. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Los datos aportados por este estudio, permitieron determinar diferencias en sensibilidad en aislamientos de <i>B. cinerea</i> a fungicidas en varios cultivos en Uruguay. La monitorizaci&oacute;n futura, utilizando la misma metodolog&iacute;a permitir&aacute; establecer diferentes perfiles de sensibilidad en cultivos y estudiar la evoluci&oacute;n de dichos perfiles en el tiempo.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La mayor&iacute;a de los aislamientos analizados en el presente trabajo resultaron ser altamente resistentes al <b>Carbendazim</b>, lo cual era esperable debido al uso repetido de los becimidazoles y las caracter&iacute;sticas de los cambios gen&eacute;ticos que confieren resistencia frente a ellos. Los bencimidazoles se utilizan a nivel mundial desde comienzos de la d&eacute;cada de 1960 y en 1971 se reportaron cepas de campo de <i>B. cinerea</i> resistentes <a name="BollenyScholten1971"></a>(<a href="#4">Bollen y Scholten, 1971</a>). En el Uruguay se han utilizado desde la d&eacute;cada de 1970, habiendo sido aplicados repetidamente cada a&ntilde;o en varios cultivos. <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Santos </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al</i><span style="color: rgb(51, 51, 255);">.</span> (<a href="#26">1989</a>) y <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Pianzzola </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al</i><span style="color: rgb(51, 51, 255);">.</span> (<a href="#24">2004</a>) determinaron resistencia a bencimidazoles en 100 y 75%, respectivamente, de las cepas de <i>Penicillium </i>sp. asociados a la cosecha y procesamiento de manzanas. Actualmente su uso ha disminuido, justamente por la falta de efectividad debido a la selecci&oacute;n de cepas resistentes. De la informaci&oacute;n que se pudo obtener sobre los fungicidas aplicados a los cultivos muestreados en el ensayo se desprende que en 2007 los bencimidazoles fueron utilizados principalmente en el norte del pa&iacute;s en la producci&oacute;n de tomate. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La persistencia de los individuos resistentes a&uacute;n cuando se dejan de usar los bencimidazoles <a name="Yourmanetal.2001"></a>(<a href="#31">Yourman <i>et al.</i>, 2001</a>; <a name="Zhaoetal.2010"></a><a href="#34">Zhao <i>et al</i>., 2010</a>) explica el hecho de no poder establecer niguna relaci&oacute;n entre el uso de bencimidazoles en el cultivo en la temporada en que se realiz&oacute; el estudio y la proporci&oacute;n de cepas resistentes. De hecho, 57% de los aislamientos resistentes proven&iacute;an de cultivos sin aplicaci&oacute;n de este tipo de fungicida. <span style="color: rgb(51, 51, 255);">LaMondia y Douglas</span> (<a href="#13">1997</a>) tampoco pudieron correlacionar la resistencia de <i>B. cinerea </i>con los fungicidas aplicados en los invern&aacute;culos de plantas ornamentales muestreados. Sin embargo, al analizar los aislamientos provenientes de vi&ntilde;a se logr&oacute; encontrar una correspondencia entre resistencia o sensibilidad de los aislamientos y el predio del cual se obtuvieron. Esto puede ser un indicio de la relaci&oacute;n entre grados de sensibilidad y manejo de este cultivo perenne y de la poca dispersi&oacute;n del hongo entre predios, tal como reportan <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Lennox y Spotts</span> (<a href="#15">2003</a>).</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La distribuci&oacute;n bimodal de los aislamientos entre muy sensibles y altamente resistentes encontrado en el presente trabajo coincide con lo reportado por otros autores (<a href="#15">Lennox y Spotts, 2003</a>; <a name="Pappas1997"></a><a href="#23">Pappas, 1997</a>; <a href="#32">Yourman y Jeffers, 1999</a>), y se explica porque algunas mutaciones en una sola base en el sitio de acci&oacute;n son capaces de conferir insensibilidad al fungicida (<a href="#15">Lennox y Spotts, 2003</a>). La causa m&aacute;s frecuente de resistencia en el campo son mutaciones naturales en los codones 198 o 200 del gen que codifica para la betatubulina <a name="Lerouxetal.2002"></a>(<a href="#17">Leroux <i>et al.</i>, 2002</a>; <a name="MayMichailides2005"></a><a href="#18">Ma y Michailides, 2005</a>). </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">En el caso de las dicarboximidas, a pesar de que se han utilizado intensamente en varios cultivos en el pa&iacute;s durante cerca de 30 a&ntilde;os, 65% de la poblaci&oacute;n de <i>B. cinerea </i>result&oacute; ser sensible a 2 mg/l de <b>Iprodione</b>. Una situaci&oacute;n similar fue reportada por <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Santos </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al.</i> (<a href="#26">1989</a>) y <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Pianzzola </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al</i><span style="color: rgb(51, 51, 255);">.</span> (<a href="#24">2004</a>), quienes detectaron 36 y 25%, respectivamente, de cepas de <i>Penicillium </i>sp. con resistencia a Iprodione, asociadas a la cosecha y procesamiento de manzanas en el Uruguay. A nivel mundial este grupo de fungicidas se utiliza desde de la d&eacute;cada de 1970 y la resistencia en cepas aisladas del campo se conoce desde 1979 <a name="DavisyDennis1979citadosporFrac"></a>(<a href="#6">Davis y Dennis, 1979 citados por Frac, 2010</a>; <a name="Holtz1979citadosporFRAC2010"></a><a href="#10">Holtz, 1979 citados por FRAC, 2010</a>). En Ontario se detect&oacute; resistencia en 1983, s&oacute;lo cuatro a&ntilde;os despu&eacute;s de las primeras aplicaciones de dicarboximidas (<a href="#22">Northover, 1988</a>). Seg&uacute;n <a name="StehmannyDeWaard1996"></a><span style="color: rgb(51, 51, 255);">Stehmann y De Waard</span> (<a href="#29">1996</a>) m&aacute;s de la mitad de la 121 aislamientos de <i>B. cinerea</i> de Europa e Israel resultaron ser resistentes a vinclozolin. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El hecho de que la mayor&iacute;a de la poblaci&oacute;n evaluada en este trabajo sea sensible o muy poco resistente puede deberse a que, a pesar de la demostrada capacidad de <i>B. cinerea </i>de perder sensibilidad a los dicarboximidas en pocos a&ntilde;os, la resistencia a dicarboximidas es una caracter&iacute;stica inestable (<a href="#22">Northover, 1988</a>; <a href="#31">Yourman <i>et al.</i>, 2001</a>). <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Northover</span> (<a href="#22">1988</a>) determin&oacute; que las cepas moderadamente resistentes a Iprodione que se encuentran a campo poseen menor capacidad competitiva debido a una disminuci&oacute;n en su tasa de crecimiento. Por lo tanto desaparecer&iacute;an por competencia con las cepas salvajes en ausencia de la presi&oacute;n de selecci&oacute;n ejercida por la presencia del fungicida.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El tipo de distribuci&oacute;n continua de los valores de CIM de las dicarboximidas observado en el presente trabajo se corresponde con lo determinado por otros investigadores (<a href="#29">Stehmann y De Waard, 1996</a>; <a href="#15">Lennox y Spotts, 2003</a>), aunque <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Myresiotis </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al.</i> (<a href="#21">2007</a>) obtuvieron una distribuci&oacute;n bimodal de la sensibilidad de los aislamientos. La distribuci&oacute;n continua puede estar relacionada con la presencia de m&aacute;s de un mecanismo de resistencia y de hecho <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Ma y Michailides</span> (<a href="#18">2005</a>) mencionan dos genes que han sido asociados a la resistencia a dicarboximidas en <i>B. cinerea</i>. </font> </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El <b>pirimetanil </b>es una anilopirimidina cuyo sitio de acci&oacute;n es en la bios&iacute;ntesis de metionina. Fungicidas de este grupo comenzaron a ser utilizados en el Uruguay a mediados de la d&eacute;cada de 1990, en una formulaci&oacute;n mezcla de ciprodinil (anilopirimidina) con fludioxinil (fenilpirrol), de diferente sitio de acci&oacute;n. Desde fines de la misma d&eacute;cada se est&aacute; utilizando el Pyrimetanil formulado sin otro principio activo. Dado que las dos anilopirimidinas poseen el mismo sitio de acci&oacute;n, las cepas resistentes a una lo ser&aacute;n tambi&eacute;n a la otra y al aplicar una, se estar&aacute;n seleccionando los individuos resistentes a cualquier anilopirimidina. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Un tercio de la poblaci&oacute;n evaluada en el presente trabajo present&oacute; una CIM &gt; 8 mg/l. <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Myresiotis </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al.</i> (<a href="#21">2007</a>) reportaron 57 y 49% de cepas resistentes a cyprodinil y pirimetanil, respectivamente, luego de siete a&ntilde;os de uso en la isla de <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Creta y Latorre </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al.</i> (<a href="#14">2002</a>), 38% de resistencia cyprodinil en vi&ntilde;edos con cuatro aplicaciones anuales durante dos ciclos en Chile. Aunque la metodolog&iacute;a de evaluaci&oacute;n fue diferente en los tres trabajos, los resultados evidencian la capacidad de las cepas resistentes de <i>B. cinerea</i> de prosperar y aumentar su frecuencia frente a la presi&oacute;n de selecci&oacute;n ejercida por la aplicaci&oacute;n repetida de anilopirimidinas. Adem&aacute;s hay que tener presente que se ha reportado entre 6 y 11% de aislamientos de <i>B. cinerea</i> con menor sensibilidad a pirimetanil o cyprodinil en poblaciones no expuestos a anilinopirimidinas (<a href="#8">Forster y Staub, 1996</a>; <a href="#14">Latorre <i>et al</i>., 2002</a>; <a href="#19">Moyano <i>et al., </i>2004</a>). La resistencia a las anilopirimidinas se considera una caracter&iacute;stica estable debido a que los aislamientos con resistencia parecen poseer una habilidad competitiva similar a los de los sensibles (<a href="#2">Bardas <i>et al.,</i> 2008</a>; <a href="#19">Moyano <i>et al</i>., 2004</a>; <a name="Zhangetal.2009"></a><a href="#33">Zhang <i>et al.</i>, 2009</a>). Sin embargo, <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Baroffio </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al.</i> (<a href="#3">2003</a>) encontraron que las cepas resistentes sobreviv&iacute;an en menor medida el invierno en vi&ntilde;edos suizos. Por lo tanto se resalta la importancia de evitar las aplicaciones repetidas de anilopirimidinas para evitar la selecci&oacute;n de cepas resistentes. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><span style="color: rgb(51, 51, 255);">Moyano </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al</i><span style="color: rgb(51, 51, 255);">.</span> (<a href="#19">2004</a>) y <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Latorre </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et. al</i><span style="color: rgb(51, 51, 255);">.</span> (<a href="#14">2002</a>) encontraron una correspondencia entre la resistencia determinada <i>in vitro</i> con la ausencia de control con anilopirimidinas <i>in vivo</i>. <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Forster y Staub</span> (<a href="#8">1996</a>), en cambio, afirman que la resistencia detectada en ensayos <i>in vitro</i> no pudo ser confirmada <i>in vivo</i>. En un trabajo futuro se deber&aacute; comparar el control logrado en plantas tratadas con pirimetanil e inoculadas con aislamientos de <i>B. cinerea</i> con diferente sensibilidad al fungicida determinada en el laboratorio, con el objetivo de estimar el significado de los ensayos <i>in vitro</i> sobre las posibilidades de control a campo. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La distribuci&oacute;n de los aislamientos seg&uacute;n su sensibilidad a pirimetanil en dos grupos es similar a lo reportado por <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Myresiotis </span><i style="color: rgb(51, 51, 255);">et al.</i> (<a href="#21">2007</a>) para los anilinopirimidinas ciprodinil y pirimetanil en la isla de Creta. Este comportamiento ser&iacute;a caracter&iacute;stico de una resistencia determinada por un gen. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El <b>Boscalid</b> se registr&oacute; en Uruguay en 2007, mientras que las strobilurinas, grupo al que pertenece <b>Pyraclostrobin</b>, se usan desde fines de la d&eacute;cada de 1990. El Boscalid pertenece al grupo de los inhibidores de la succinato deshidrogenasa de la cadena respiratoria f&uacute;ngica, los que se conocen actualmente como fungicidas SDHI. La primera generaci&oacute;n de estos fungicidas fue desarrollada hace m&aacute;s de 40 a&ntilde;os e incluy&oacute; principios activos como el carboxin, pero debido a su uso limitado a pocos patosistemas, los casos de resistencia a campo fueron escasos. En cuanto a Boscalid, cepas resistentes provenientes de vid y frutilla fueron detectados en 2006 y 2007 respectivamente, en pa&iacute;ses de Europa <a name="FRAC2009"></a>(<a href="#9">FRAC, 2009</a>). La resistencia a las estrobilurinas, principal grupo de los fungicidas QoI, ha sido determinada en varios hongos fitopat&oacute;genos de importancia en diferentes partes del mundo. La resistencia en <i>B. cinerea</i> se report&oacute; en 2008 en cultivos de frutilla y en citrus <a name="Ishii2008"></a>(<a href="#11">Ishii, 2008</a>).</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Los aislamientos del presente trabajo con resistencia simult&aacute;nea a ambos ingredientes activos fueron obtenidos en 2007 y provienen de cinco predios diferentes, tres del norte del pa&iacute;s (dos cepas de frutilla y uno de tomate) y dos del sur: un vi&ntilde;edo y un invern&aacute;culo de flores.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Dos art&iacute;culos publicados en 2010 reportaron la detecci&oacute;n de resistencia simult&aacute;nea a Boscalid y Pyraclostrobin en aislamientos de <i>B. cinerea</i> provenientes de kiwi en Grecia en 2008-2009 (<a href="#1">Bardas <i>et al</i>., 2009</a>) y de manzana en Estados Unidos de Am&eacute;rica en 2008 <a name="KimyXiao2010"></a>(<a href="#12">Kim y Xiao, 2010</a>). Los aislamientos en cuesti&oacute;n fueron obtenidos de frutos producidos en 2008 en cultivos tratados con el fungicida cuya formulaci&oacute;n conten&iacute;a ambos principios activos. La distribuci&oacute;n de frecuencias de valores de sensibilidad tanto a Boscalid como a Pyraclostrobin fue bimodal (<a href="#1">Bardas <i>et al</i>., 2009</a>; <a href="#12">Kim y Xiao, 2010</a>). </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El fenotipo con alta resistencia a varios fungicidas m&aacute;s com&uacute;n encontrado en este trabajo fue el que present&oacute; alta CIM para Carbendazim y para Iprodione, probablemente por la alta persistencia de la resistencia al primero y por el uso continuado en la actualidad del segundo. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Considerando los diferentes cultivos, el <b>ar&aacute;ndano</b> fue el que present&oacute; menor proporci&oacute;n de resistencia a fungicidas en general. Este es un cultivo nuevo para el pa&iacute;s desarrollado reci&eacute;n en los a&ntilde;os 2000, lo cual podr&iacute;a explicar la baja proporci&oacute;n de individuos resistentes a la mayor&iacute;a de los fungicidas evaluados. Para mantener esta situaci&oacute;n, se deber&aacute; limitar el uso de fungicidas de alto riesgo, altern&aacute;ndolos con otros de menor riesgo. No se encontraron evidencias de que se est&eacute; procediendo de esta manera en los predios muestreados en el presente estudio. Dado que la mayor&iacute;a de los aislamientos se obtuvieron de cultivos ubicados en predios frut&iacute;colas donde se han utilizado fungicidas dicarboximidas y bencimidazoles durante a&ntilde;os, se podr&iacute;a esperar que las esporas que pudieran migrar hacia el ar&aacute;ndano presentar&iacute;an una proporci&oacute;n de aislamientos resistentes al menos a los bencimidazoles. Los resultados del presente trabajo estar&iacute;an sugiriendo que existe poca migraci&oacute;n de cepas de un cultivo a otro, tal como afirman <span style="color: rgb(51, 51, 255);">Lennox y Spotts</span> (<a href="#15">2003</a>). </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">En <b>eucalipto</b> se encontr&oacute; muy poca resistencia a los fungicidas evaluados con excepci&oacute;n del Carbendazim. El aumento de la forestaci&oacute;n en los &uacute;ltimos 20 a&ntilde;os llevado a cabo por grandes empresas ha llevado a la producci&oacute;n masiva de plantines en invern&aacute;culos de gran tama&ntilde;o, donde las condiciones son &oacute;ptimas para <i>B. cinerea</i>. El uso repetido de bencimidazoles en a&ntilde;os anteriores en estas condiciones puede explicar el hecho de que 94% de los aislamientos obtenidos de plantines de eucalipto resultaron ser resistentes a Carbendazim. Actualmente, en general no se est&aacute;n usando bencimidazoles, lo cual parece una decisi&oacute;n racional en esta situaci&oacute;n. La informaci&oacute;n aportada en el muestreo indica que durante el invierno de 2007 se aplic&oacute; solamente un fungicida, el cual contiene una anilopirimidina y un fenilpirrol. Aunque en el muestreo realizado no se encontraron aislamientos resistentes a anilopirimidinas en los invern&aacute;culos, esto puede deberse a que la proporci&oacute;n a&uacute;n era demasiado baja para detectarlos, pero es esperable que aumenten r&aacute;pidamente su frecuencia si se utiliza repetidamente fungicidas de este grupo. </font> </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La mayor&iacute;a de los aislamientos procedentes de la <b>vid</b> eran de cultivos manejados seg&uacute;n el Programa de Producci&oacute;n Integrada de Uva, el cual limita el uso de los fungicidas de mayor riesgo de resistencia como los bencimidazoles a una aplicaci&oacute;n al a&ntilde;o. Esto podr&iacute;a explicar el hecho de que la vid fue uno de los cultivos con menor proporci&oacute;n de aislamientos resistentes a Carbendazim. En relaci&oacute;n con los otros fungicidas este cultivo estuvo en un lugar intermedio, excepto en el an&aacute;lisis de Boscalid + Pyraclostrobin. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">El <b>tomate</b> estuvo entre los cultivos con m&aacute;s resistencia a todos los fungicidas excepto Boscalid + Pyraclostrobin, posiblemente porque este producto se ha usado poco en el cultivo hasta el momento. La resistencia a m&uacute;ltiples principios activos refleja la utilizaci&oacute;n de varios fungicidas de diferentes grupos durante el ciclo del cultivo. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">La <b>frutilla</b> en general estuvo en una ubicaci&oacute;n intermedia de nivel de resistencia para todos los fungicidas. </font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Aunque el muestreo de <b>rosa</b> fue muy limitado, se encontr&oacute; un alto nivel de resistencia a todos los fungicidas evaluados, lo que estar&iacute;a indicando un uso muy intenso de fungicidas en el cultivo.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Conclusiones</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Se determin&oacute; la existencia de resistencia en todos los cultivos y zonas evaluados y a todos los fungicidas evaluados. Se detect&oacute; el uso de pr&aacute;cticas como la utilizaci&oacute;n de un &uacute;nico fungicida con modo de acci&oacute;n de sitio &uacute;nico (lo cual implica alto riesgo de generaci&oacute;n de resistencia) en invern&aacute;culos de eucalipto. Es recomendable la revisi&oacute;n de las pr&aacute;cticas de uso de fungicidas y el establecimiento de un programa de manejo de resistencia. Como perspectivas futuras de este trabajo se deber&iacute;a continuar evaluando la sensibilidad a los diferentes fungicidas con la misma metodolog&iacute;a y asociarlo con el manejo en cada punto de muestreo, de manera de conocer la evoluci&oacute;n de los perfiles de sensibilidad y poder manejar mejor la enfermedad.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Agradecimientos</b></font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana">Al Programa de Desarrollo Tecnol&oacute;gico (PDT ) que financi&oacute; e hizo posible la investigaci&oacute;n. A los numerosos productores que nos permitieron recoger muestras de sus cultivos. A las empresas Bayer S.A. y BASF Uruguaya S.A. que proporcionaron los fungicidas para los ensayos de sensibilidad.</font></p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"> <font style="font-size: 10pt;" size="2" face="Verdana"><b>Bibliograf&iacute;a </b></font> </p>         <p style="margin-bottom: 0cm;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     </font>     </p>         <!-- ref --><p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="1"></a><a href="#Bardasetal.2009">Bardas GA, Veloukas T, Koutitab O, Karaoglanidisa GS.</a></b><a href="#Bardasetal.2009"> 2009</a>. Multiple resistance of <i>Botrytis cinerea </i>from kiwifruit to SDHIs, QoIs and fungicides of other chemical groups. <i>Pest Management &nbsp;Science</i>, 66: 967 - 973.    </font></p>         <!-- ref --><p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="2"></a><a href="#Bardasetal.2008">Bardas GA, Myresiotis CK, Karaoglanidis GS.</a></b><a href="#Bardasetal.2008"> 2008</a>. Stability and fitness of anilinopyrimidine-resistant strains of <i>Botrytis cinerea</i>. <i>Phytopathology</i>, 98: 443 - 450.    </font></p>         <!-- ref --><p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="3"></a><a href="#Baroffioetal.2003">Baroffio CA, Siegfried W, Hilber UW.</a></b><a href="#Baroffioetal.2003"> 2003</a>. Long-term monitoring for resistance of <i>Botryotinia fuckeliana</i> to anilopyrimidine, phenylpyrrole, and hydroxyanilide fungicides in Switzerland. <i>Plant Disease</i>, 87: 662 - 666.     </font> </p>         <!-- ref --><p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="4"></a><a href="#BollenyScholten1971">Bollen G, Scholten G. </a></b><a href="#BollenyScholten1971">1971</a>. Acquired resistance to benomyl and some other systemic fungicides in a strain of <i>Botrytis cinerea</i> in cyclamen. <i>Netherlands Journal of Plant Pathology</i>, 77: 83 - 90.    </font></p>         <!-- ref --><p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="5"></a><a href="#Caba%F1asetal.2009">Caba&ntilde;as R, Abarca ML, Bragulat MR, Caba&ntilde;es FJ.</a></b><a href="#Caba%F1asetal.2009"> 2009</a>. In vitro activity of imazalil against <i>Penicillium expansum</i> : Comparison of the CLSI M38-A broth microdilution method with traditional techniques. <i>International Journal of Food Microbiology</i>, 129(1): 26 - 29.    </font></p>         <!-- ref --><p style="margin-bottom: 0cm;"><font size="2" face="Verdana"><b><a name="6"></a><a href="#DavisyDennis1979citadosporFrac">Davis RP, Dennis C. </a></b><a href="#DavisyDennis1979citadosporFrac">1979</a>. Use of dicarboximide fungicides on strawberries and potential problems of resistance in <i>Botrytis cinerea.</i> Citado por: FRAC. List of plant pathogenic organisms resistant to disease control agents [En l&iacute;nea]. 66p. Consultado 11 febrero 2011. 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